МОЖЛИВОСТІ ТА ПЕРСПЕКТИВИ ЗАСТОСУВАННЯ РОСЛИН ДЛЯ ЛІКУВАННЯ ГЕЛЬМІНТОЗІВ У СВІЙСЬКИХ ЖУЙНИХ


Скачати статтю 

УДК: 636.3: 615.322: 616-093/-098: 615.246.9

DOI: 10.37143/2786-7730-2023-2(80)05

БІБЛІОГРАФІЯ за ДСТУ: Лукаш О. В., Ткаченко Г. М., Кургалюк Н. М. Можливості та перспективи застосування рослин для лікування гельмінтозів у свійських жуйних. Свинарство і агропромислове виробництво : міжвідом. темат. наук. зб. / Ін-т свинарства і АПВ НААН. Полтава, 2023. Вип. 2(80). С. 67-86. doi: 10.37143/2786-7730-2023-2(80)05


О. В. Лукаш Док. біологічних наук, професор, професор кафедри екології, Географія і природокористування
ORCID:https://orcid.org/0000-0003-2702-6430
E-mail:: lukash1120@gmail.com
Національний університет «Чернігівський колегіум» імені Т. Г. Шевченка вул. Гетьмана Полуботка, м. Чернігів, Україна, 14013
Г. М. Ткаченко Док. біологічних наук, професор кафедри зоології
ORCID:https//orcid.org/0000-0003-3951-9005
E-mail:: halina.tkaczenko@upsl.edu.pl
Інститут біології Поморського університету в Слупську вул. Арцишевського 22Б, м. Слупськ, Польща 76-200
3 Н. М. КургалюкДок. біологічних наук, професор кафедри фізіології тварин,
ORCID:https//orcid.org/0000-0002-4669-1092
E-mail:natalia.kurhaluk@upsl.edu.pl
Інститут біології Поморського університету в Слупську вул. Арцишевського 22Б, м. Слупськ, Польща 76-200

Анотація

Мета.Здійснити огляд результатів сучасних досліджень антигельмінтних властивостей рослин та окреслити перспективи використання рослин з антипаразитарними властивостями у практиці тваринництва Європи. Методи. Аналіз та узагальнення результатів досліджень антигельмінтних властивостей видів рослин природних та культивованих інтродукованої флори. Результати. Вже досить давно з ’ясовано, що шлунково-кишкові гельмінти є серйозною проблемою для здоров'я тварин та є найбільш суттєвим обмеженням у випасі свійських жуйних. Встановлено, що комбінація оптимізованого використання антигельмінтиків і альтернативних підходів видається розумним підходом у стійких програмах боротьби з паразитами. Для підтвердження антигельмінтних властивостей рослинних препаратів у світовій практиці використовуються різноманітні методи як in vivo, так і in vitro. Дослідження in vitro корисні як попередній скринінг активності, та в основному проводяться на вільноживучих, а не на паразитарних стадіях нематод. Концентрації потенційно активних сполук, що використовуються в дослідженнях in vitro, не завжди відповідають біодоступності in vivo. Тому аналізи in vitro завжди повинні супроводжуватися дослідженнями in vivo. Контрольовані дослідження in vivo показують, що в більшості випадків рослинні препарати призводили до значно нижчої елімінації паразитів, ніж при застосуванні синтетичних антигельмінтиків. Проаналізовані результати сучасних досліджень антигельмінтних властивостей рослин та перспективи використання рослин з антипаразитарними властивостями у практиці тваринництва Європи. Висновки. В контексті упровадження систем органічного землеробства і тваринництва не можна покладатися лише на хіміотерапевтичне лікування інфекційних паразитарних хвороб жуйних, викликаних гельмінтами. З огляду на те, що фітотерапія показує більш різноманітну ефективність порівняно з відомою ефективністю антигельмінтиків, вона заслуговує ширшого упровадження у практику тваринництва. Лікування свійських жуйних тварин фітопрепаратами, як і хіміотерапія, буде ефективним, якщо його поєднувати з випасанням на екологічно та санітарно збалансованих пасовищах. Д ля лікування та профілактики гельмінтозів у свійських ж уйних доцільно ширше за існуючий обсяг використовувати у ветеринарній медицині етноботанічно традиційні види рослин, антигельмінтна ефективність яких достовірно підтверж дена експериментально. Перспективним у подальших дослідж еннях є пошук протипаразитарних видів рослин природної та культивованої флори Європи, та дослідж ення ефективності їх токсичної дії з метою використання у ветеринарній практиці скотарства, свинарства, вівчарства та птахівництва

Ключові слова: фітомедицина, фітопрепарати, рослинні метаболіти, гельмінтози, дрібні свійські жуйні, боротьба з паразитами, профілактика.

БІБЛІОГРАФІЯ

  • 1. H ofm ann R. R. Evolutionary steps o f ecophysiological adaptation and diversification o f rum inants: a com parative view o f their digestive system. Oecologia. 1989. Vol. 78(4). P. 443-457. doi: 10.1007/BF00378733
  • 2. G ordon I. J. B row sing and grazing rum inants: are they different beasts? Forest Ecology and Management. 2003. Vol. 181(1-2). P. 13-21. doi: 10.1016/S0378- 1127(03)00124-5
  • 3. D uncan A. J., Poppi D. P. N utritional Ecology o f G razing and B row sing Rum inants. In: Gordon, I. J., Prins, H .H. T. (eds) The Ecology o f Browsing and Grazing. Ecological Studies. 2008. Vol. 195. Springer, Berlin, H eidelberg. doi: 10.1007/978-3- 540-72422-3_4
  • 4. U nderw ood W. J., Blauw iekel R., D elano M. L., Gillesby R., M ischler S. A., Schoell A. B iology and D iseases o f R um inants (Sheep, Goats, and Cattle). Laboratory Animal Medicine. 2015. P. 623-694. doi: 10.1016/B978-0-12-409527-4.00015-8
  • 5. B lancou J. A history o f the traceability o f anim als and anim al products. Revue scientifique et technique (International Office o f Epizootics). 2001. Vol. 20(2). P. 413­ 425.
  • 6. Pereira F. C., Berry D. M icrobial nutrient niches in the gut. Environmental microbiology. 2017. Vol. 19(4 ). P. 1366-1378. doi: 10.1111/1462-2920.13659
  • 7. Tong F., W ang T., Gao N. L., Liu Z., Cui K., D uan Y., W u S., Luo Y., Li Z., Y ang C., X u Y., Lin B., Y ang L., Pauciullo A., Shi D., H ua G., Chen W. H., Liu Q. The m icrobiom e o f the buffalo digestive tract. Nature communications. 2022. Vol. 13(1). P. 823. doi: 10.1038/s41467-022-28402-9
  • 8. K ingston-Sm ith A. H., Edw ards J. E., H uw s S. A., K im E. J., A bberton M. Plantbased strategies tow ards m inim ising 'livestock's long shadow'. The Proceedings o f the Nutrition Society. 2010. Vol. 69(4). P. 613-620. doi: 10.1017/S0029665110001953
  • 9. Shaani Y., Zehavi T., Eyal S., M iron J., M izrahi I. (2018). M icrobiom e niche m odification drives diurnal rum en com m unity assem bly, overpow ering individual variability and diet effects. The ISME journal. 2018. Vol. 12(10). P. 2446-2457. doi: 10.1038/s41396-018-0203-0
  • 10. Strydom T., Lavan R. P., Torres S., H eaney K. The E conom ic Im pact o f Parasitism from N em atodes, Trem atodes and Ticks on B eef Cattle Production. Animals: an open access journal from MDPI. 2023. Vol. 13(10). 1599. doi: 10.3390/ani13101599
  • 11. R oeber F., Jex A. R., G asser R. B. Im pact o f gastrointestinal parasitic nem atodes o f sheep, and the role o f advanced m olecular tools for exploring epidem iology and drug resistance - an A ustralian perspective. Parasites & vectors. 2013. Vol. 6. 153. doi: 10.1186/1756-3305-6-153
  • 12. Fissiha W ., K inde M. Z. A nthelm intic R esistance and Its M echanism : A Review. Infection and drug resistance. 2021. Vol. 14. P. 5403-5410. doi: 10.2147/IDR.S332378
  • 13. Shalaby H. A., El-M oghazy F. M. In vitro effect o f Nigella sativa oil on adult Toxocara vitulorum. Pakistan journal o f biological sciences: PJBS. 2013. Vol. 16(22). P. 1557-1562. doi: 10.3923/pjbs.2013.1557.1562
  • 14. K um ar N., R ao T. K., V arghese A., R athor V. S. Internal parasite m anagem ent in grazing livestock. Journal o f parasitic diseases: official organ o f the Indian Society fo r Parasitology. 2013. Vol. 37(2). P. 151-157. doi: 10.1007/s12639-012-0215-z
  • 15. Bricarello P. A., Longo C., da R ocha R. A., H otzel M. J. U nderstanding A nim alPlant-Parasite Interactions to Im prove the M anagem ent o f G astrointestinal N em atodes in G razing Rum inants. Pathogens (Basel, Switzerland). 2023. Vol. 12(4). P. 531. doi: 10.3390/pathogens12040531
  • 16. Z vinorova P. I., H alim ani T. E., M uchadeyi F. C., M atika O., R iggio V., D zam a K. B reeding for resistance to gastrointestinal nem atodes - the potential in lowinput/output small rum inant production systems. Veterinary parasitology. 2016. Vol. 225. P. 19-28. doi: 10.1016/j.vetpar.2016.05.015
  • 17. Erb M ., K liebenstein D. J. Plant Secondary M etabolites as D efenses, R egulators, and Prim ary M etabolites: The Blurred Functional Trichotom y. Plant physiology. 2020. Vol. 184(1). P. 39-52. doi: 10.1104/pp.20.00433
  • 18. Isah T. Stress and defense responses in plant secondary m etabolites production. Biological research. 2019. Vol. 52(1). P. 39. doi: 10.1186/s40659-019-0246-3
  • 19. M utha R. E., Tatiya A. U., Surana S. J. Flavonoids as natural phenolic com pounds and their role in therapeutics: an overview. Future journal o f pharmaceutical sciences. 2021. Vol. 7(1). P. 25. doi: 10.1186/s43094-020-00161-8
  • 20. Ku-Vera J. C., Jimenez-Ocampo R., Valencia-Salazar S. S., MontoyaFlores M. D., Molina-Botero I. C., Arango J., Gomez-Bravo C. A., Aguilar-Perez C. F., Solorio-Sanchez F. J. Role of Secondary Plant Metabolites on Enteric Methane Mitigation in Ruminants. Frontiers in veterinary science. 2020. Vol. 7. P. 584. doi: 10.3389/fvets.2020.00584
  • 21. McIntos F. M., Williams P., Losa R., Wallace R. J., Beever D. A., Newbold C. J. Effects of essential oils on ruminal microorganisms and their protein metabolism. Applied and environmental microbiology. 2003. Vol. 69(8). P. 5011-5014. doi: 10.1128/AEM.69.8.5011-5014.2003
  • 22. Andri F., Huda A. N., Marjuki M. The use of essential oils as a growth promoter for small ruminants: a systematic review and meta-analysis. F1000Research. 2020. Vol. 9. P. 486. doi: 10.12688/f1000research.24123.2
  • 23. Besharati M., Maggiolino A., Palangi V., Kaya A., Jabbar M., Eseceli H., De Palo P., Lorenzo J. M. Tannin in Ruminant Nutrition: Review. Molecules (Basel, Switzerland). 2022. Vol. 27(23). P. 8273. doi: 10.3390/molecules27238273
  • 24. Cobellis G., Trabalza-Marinucci M. Yu Z. Critical evaluation of essential oils as rumen modifiers in ruminant nutrition: A review. The Science of the total environment. 2016. P. 545-546, 556-568. doi: 10.1016/j.scitotenv.2015.12.103
  • 25. Hoste H., Meza-OCampos G., Marchand S., Sotiraki S., Sarasti K., Blomstrand B. M., Williams A. R., Thamsborg S. M., Athanasiadou S., Enemark H. L., Torres Acosta J. F., Mancilla-Montelongo G., Castro C. S., Costa-Junior L. M., Louvandini H., Sousa D. M., Salminen J. P., Karonen M., Engstrom M., Charlier J., ... Morgan E. R. Use of agro-industrial by-products containing tannins for the integrated control of gastrointestinal nematodes in ruminants. Utilisation de sous-produits agroindustriels contenant des tanins pour le controle integre des nematodes gastro-intestinaux chez les ruminants. Parasite (Paris, France). 2022. Vol. 29. 10. doi: 10.1051/parasite/2022010
  • 26. Lopes T. S., Fontoura P. S., Oliveira A., Rizzo F. A., Silveira S., Streck A. F. Use of plant extracts and essential oils in the control of bovine mastitis. Research in veterinary science. 2020. Vol. 131. P. 186-193. doi: 10.1016/j.rvsc.2020.04.025
  • 27. Karreman H. J. Treating Dairy Cows Naturally: Thoughts & Strategies. 2nd edition, Publisher: Acres USA., 2007.
  • 28. Waller P. J., Bernes G., Thamsborg S. M., Sukura A., Richter S. H., Ingebrigtsen K., Hoglun, J. Plants as de-worming agents of livestock in the Nordic countries: historical perspective, popular beliefs and prospects for the future. Acta veterinaria Scandinavica. 2001. Vol. 42(1). P. 31-44. doi: 10.1186/1751-0147-42-31
  • 29. Thamsborg S. M., J0 rgensen R. J., Waller P. J., Nansen P. The influence of stocking rate on gastrointestinal nematode infections of sheep over a 2-year grazing period. Veterinary parasitology. 1996. Vol. 67(3-4). P. 207-224. doi: 10.1016/s0304- 4017(96)01045-x
  • 30. Mee J. F., Boyle L. A. Assessing whether dairy cow welfare is "better" in pasture-based than in confinement-based management systems. New Zealand veterinary journal, 2020. Vol. 68(3). P. 168-177. doi: 10.1080/00480169.2020.1721034
  • 31. Spigarelli C., Zuliani A., Battini M., Mattiello S., Bovolenta S. Welfare Assessment on Pasture: A Review on Animal-Based Measures for Ruminants. Animals: an open access journal from M DPI. 2020. Vol. 10(4). 609. doi: 10.3390/ani10040609
  • 32. Marley C. L., Cook R., Keatinge R., Barrett J., Lampkin N. H. The effect of birdsfoot trefoil (Lotus corniculatus) and chicory (Cichorium intybus) on parasite intensities and performance of lambs naturally infected with helminth parasites. Veterinary Parasitology. 2003. Vol. 112(1-2). P. 147-155. doi: 10.1016/s0304- 4017(02)00412-0
  • 33. Niezen J. H., Charleston W. A., Robertson H. A., Shelton D., Waghorn G. C., Green R. The effect of feeding sulla (Hedysarum coronarium) or lucerne (Medicago sativa) on lamb parasite burdens and development of immunity to gastrointestinal nematodes. Veterinary parasitology. 2002. Vol. 105(3). P. 229-245. doi: 10.1016/s0304- 4017(02)00014-6
  • 34. Molan A. L., Waghorn G. C., Min B. R., McNabb W. C. The effect of condensed tannins from seven herbages on Trichostrongylus colubriformis larval migration in vitro. Folia parasitologica. 2000. Vol. 47(1). P. 39-44. doi: 10.14411/fp.2000.007
  • 35. Paolini V., Fouraste I., Hoste H. In vitro effects of three woody plant and sainfoin extracts on 3rd-stage larvae and adult worms of three gastrointestinal nematodes. Parasitology. 2004. Vol. 129(Pt 1). P. 69-77. doi: 10.1017/s0031182004005268
  • 36. Rinaldi L., Krucken J., Martinez-Valladares M., Pepe P., Maurelli M. P., de Queiroz C., Castilla Gomez de Aguero V., Wang T., Cringoli G., Charlier J., Gilleard J. S., von Samson-Himmelstjerna G. Advances in diagnosis of gastrointestinal nematodes in livestock and companion animals. Advances in parasitology. 2022. Vol. 118. P. 85-176. doi: 10.1016/bs.apar.2022.07.002
  • 37. Assis L. M., Bevilaqua C. M., Morais S. M., Vieira L. S., Costa C. T., Souza J. A. Ovicidal and larvicidal activity in vitro of Spigelia anthelmia Linn. extracts on Haemonchus contortus. Veterinary parasitology. 2003. Vol. 117(1-2). P. 43-49. doi: 10.1016/j.vetpar.2003.07.021.
  • 38. Githiori J. B., Athanasiadou S., Thamsborg S. M. Use of plants in novel approaches for control of gastrointestinal helminths in livestock with emphasis on small ruminants. Veterinary parasitology. 2006. Vol. 139(4). P. 308-320. doi: 10.1016/j.vetpar.2006.04.021
  • 39. Hoste H., Torres-Acosta J. F., Sandoval-Castro C. A., Mueller-Harvey I., Sotiraki S., Louvandini H., Thamsborg S. M., Terrill T. H. Tannin containing legumes as a model for nutraceuticals against digestive parasites in livestock. Veterinary parasitology. 2015. Vol. 212(1-2). P. 5-17. doi: 10.1016/j.vetpar.2015.06.026
  • 40. Burke J. M. Miller, J. E. Sustainable Approaches to Parasite Control in Ruminant Livestock. The Veterinary clinics of North America. Food animal practice. 2020. Vol. 36(1). P. 89-107. doi: 10.1016/j.cvfa.2019.11.007
  • 41. Kearney P. E., Murray P. J., Hoy J. M., Hohenhaus M., Kotze A. The 'Toolbox' of strategies for managing Haemonchus contortus in goats: What's in and what's out. Veterinary parasitology. 2016. Vol. 220. P. 93-107. doi: 10.1016/j.vetpar.2016.02.028
  • 42. Mbaria J. M., Maitho T. E., Mitem E. S., Muchiri D. J. Comparative efficacy of pyrethrum marc with albendazole against sheep gastrointestinal nematodes. Tropical animal health and production. 1998. Vol. 30(1). P. 17-22. doi: 10.1023/a:1005005208588
  • 43. Gathuma J. M., Mbaria J. M., Wanyama J., Kaburia H. F., Mpoke L., Mwangi J. N., Samburu, Healers T. Efficacy of Myrsine africana, Albizia anthelmintica and Hilderbrantia sepalosa herbal remedies against mixed natural sheep helminthosis in Samburu district, Kenya. Journal o f ethnopharmacology. 2004. Vol. 91(1). P. 7-12. doi: 10.1016/j .jep.2003.11.007
  • 44. Onyeyili P. A., Nwosu C. O., Amin J. D., Jibike J. I. Anthelmintic activity of crude aqueous extract of Nauclea latifolia stem bark against ovine nematodes. Fitoterapia. 2001. Vol. 72(1). P. 12-21. doi: 10.1016/s0367-326x(00)00237-9
  • 45. G ithiori J. B., H oglund J., W aller P. J., B aker R. L. A nthelm intic activity o f preparations derived from Myrsine africana and Rapanea melanophloeos against the nem atode parasite, Haemonchus contortus, o f sheep. Journal o f ethnopharmacology. 2002. Vol. 80(2-3). P. 187-191. doi: 10.1016/s0378-8741(02)00030-2
  • 46. G ithiori J. B., H oglund J., W aller P. J., B aker R. L. Evaluation o f anthelm intic properties o f some plants used as livestock dew orm ers against Haemonchus contortus infections in sheep. Parasitology. 2004. Vol. 129(Pt 2). P. 245-253. doi: 10.1017/s0031182004005566
  • 47. Fernandez T. J., Jr, Portugaliza H. P., B raga F. B., V asquez E. A., A cabal A. D., D ivina B. P., Pedere W. B. Effective D ose (ED) and quality control studies o f the Crude Ethanolic Extract (CEE) m ixture o f m akabuhay, caim ito and m akahiya (M CM ) as dew orm er for goats against Haemonchus contortus. A sian Journal o f Experim ental Biological Sciences. 2013. Vol. 41. P. 28-35.
  • 48. H ordegen P., H ertzberg H., H eilm ann J., Langhan W ., M aurer V. The anthelm intic efficacy o f five plant products against gastrointestinal trichostrongylids in artificially infected lambs. Veterinary parasitology. 2003. Vol. 117(1-2). P. 51-60. doi: 10.1016/j.vetpar.2003.07.027
  • 49. H aridy F. M ., El G arhy M . F., M orsy T. A. Efficacy o f M irazid (Commiphora molmol) against fascioliasis in Egyptian sheep. Journal o f the Egyptian Society o f Parasitology. 2003. Vol. 33(3). P. 917-924.
  • 50. M assoud A., M orsy T. A., H aridy F. M. Treatm ent o f Egyptian dicrocoeliasis in m an and anim als w ith M irazid. Journal o f the Egyptian Society o f Parasitology. 2003. Vol. 33(2). P. 437-442.
  • 51. Pessoa L. M ., M orais S. M ., B evilaqua C. M ., Luciano J. H. A nthelm intic activity o f essential oil o f Ocimum gratissimum Linn. and eugenol against Haemonchus contortus. Veterinary parasitology. 2002. Vol. 109(1-2). P. 59-63. doi: 10.1016/s0304- 4017(02)00253-4
  • 52. A nonym ous, G arlic for cryptosporidiosis? Treatment review, 1996. (№ 22). 11.
  • 53. Olson E. J., Epperson W. B., Zem an D. H., Fayer R., H ildreth M. B. Effects o f an allicin-based product on cryptosporidiosis in neonatal calves. Journal o f the American Veterinary Medical Associationю 1998. Vol. 212(7). P. 987-990.
  • 54. Bhavare V., Pokharka R. Com parative in vitro anticestodal activity o f some m edicinal plants from w estern India. Pharmacologyonline. 2010. Vol. 3. P. 142-145.
  • 55. A ggarwal R., K aur K., Suri M ., Bagai U. A nthelm intic potential o f Calotropis procera, Azadirachta indica and Punica granatum against Gastrothylax indicus. Journal o f parasitic diseases : official organ o f the Indian Society for Parasitology. 2016. Vol. 40(4). P. 1230-1238. doi: 10.1007/s12639-015-0658-0
  • 56. Zam ilpa A., G artia-A lanis C., Lopez-A rellano M. E., H ernandezV elazquez V. M ., V alladares-C isneros M. G., Salinas-Sanchez D. O., M endoza-de Gives P. In vitro nem aticidal effect o f Chenopodium ambrosioides and Castela tortuosa n-hexane extracts against Haemonchus contortus (N em atoda) and their anthelm intic effect in gerbils. Journal o f helminthology. 2019. Vol. 93(4). P. 434-439. doi: 10.1017/S0022149X18000433
  • 57. B adar S. N ., Iqbal Z., Sajid M. S., R izw an H. M ., Shareef M ., M alik M. A., K han M. N. C om parative anthelm intic efficacy o f Arundo donax, Areca catechu, and Ferula assa-foetida against Haemonchus contortus. Revista brasileira de parasitologia veterinaria = B razilian journal o f veterinary parasitology: O rgao O ficial do Colegio B rasileiro de Parasitologia V eterinaria. 2021. Vol. 30(2). P. e001221. doi: 10.1590/S 1984-29612021028
  • 58. Romero N., Areche C., Cubides-Cardenas J., Escobar N., Gartia-Beltran O., Simirgiotis M. J., Cespedes A. In Vitro Anthelmintic Evaluation of Gliricidia sepium, Leucaena leucocephala, and Pithecellobium dulce: Fingerprint Analysis of Extracts by UHPLC-Orbitrap Mass Spectrometry. Molecules (Basel, Switzerland). 2020. Vol. 25(13). P. 3002. doi: 10.3390/molecules25133002
  • 59. Hernandez P. M., Salem A. Z., Elghandour M. M., Cipriano-Salazar M., CruzLagunas B., Camacho L. M. Anthelmintic effects of Salix babylonica L. and Leucaena leucocephala lam. extracts in growing lambs. tropical animal health and production. 2014. Vol. 46(1). P. 173-178. doi: 10.1007/s11250-013-0471-7
  • 60. Szewczuk V. D., Mongelli E. R., Pomilio A. B. In vitro anthelmintic activity of Melia azedarach naturalized in Argentina. Phytotherapy research: PTR. 2006. Vol. 20(11). P. 993-996. doi: 10.1002/ptr.1929
  • 61. Cala A. C., Chagas A. C., Oliveira M. C., Matos A. P., Borges L. M., Sousa L. A., Souza F. A., Oliveira G. P. In vitro anthelmintic effect of Melia azedarach L. and Trichilia claussenii C. against sheep gastrointestinal nematodes. Experimental parasitology. 2012. Vol. 130(2). P. 98-102. doi: 10.1016/j.exppara.2011.12.011
  • 62. Maciel M. V., Morais S. M., Bevilaqua C. M., Camur9 a-Vasconcelos A. L., Cost C. T., Castro C. M. Ovicidal and larvicidal activity of Melia azedarach extracts on Haemonchus contortus. Veterinary parasitology. 2006. Vol. 140(1-2). P. 98-104. doi: 10.1016/j.vetpar.2006.03.007
  • 63. Kamaraj C., Rahuman A. A., Bagavan A., Mohamed M. J., Elango G., Rajakumar G., Zahir A. A., Santhoshkumar T., Marimuthu S. Ovicidal and larvicidal activity of crude extracts of Melia azedarach against Haemonchus contortus (Strongylida). Parasitology research. 2010. Vol. 106(5). P. 1071-1077. doi: 10.1007/s00436-010-1750-0
  • 64. Fakae B. B., Campbell A. M., Barrett J., Scott I. M., Teesdale-Spittle P. H., Liebau E., Brophy P. M. Inhibition of glutathione S-transferases (GSTs) from parasitic nematodes by extracts from traditional Nigerian medicinal plants. Phytotherapy research: PTR. 2000. Vol. 14(8). P, 630-634. doi: 10.1002/1099-1573(200012)14:8<630::aidptr773>3.0.co;2-5
  • 65. Kaiaty A. M., Salib F. A., El-Gameel S. M., Hussien A. M. Kamel M. S. Anthelmintic activity of pomegranate peel extract (Punica granatum) and synthetic anthelmintics against gastrointestinal nematodes in cattle, sheep, goats, and buffalos: in vivo study. Parasitology research. 2021. Vol. 120(11). P. 3883-3893. doi: 10.1007/s00436-021 -07311 -8
  • 66. Castagna F., Bava R., Musolino V., Piras C., Cardamone A., Carresi C., Lupia C., Bosco A., Rinaldi L., Cringoli G., Palma E., Musella V., Britti D. Potential New Therapeutic Approaches Based on Punica granatum Fruits Compared to Synthetic Anthelmintics for the Sustainable Control of Gastrointestinal Nematodes in Sheep. Animals: an open access journal from MDPI. 2022. Vol. 12(20). P. 2883. doi: 10.3390/ani12202883
  • 67. Dhanraj K. M., Veerakumari L. In vitro effect of Syzygium aromaticum on the motility and acetylcholinesterase of Cotylophoron cotylophorum. Indian Journal of Veterinary and Animal Sciences Research. 2014. Vol. 43. P. 187-194.
  • 68. Imani-Baran A., Abdollahi J., Akbari H., Jafarirad S., Moharramnejad S. Anthelmintic activity of crude powder and crude aqueous extract of Trachyspermum ammi on gastrointestinal nematodes in donkey (Equus asinus): An in vivo study. Journal o f ethnopharmacology. 2020. Vol. 248. 112249. doi: 10.1016/j .jep.2019.112249
  • 69. Lateef M., Iqbal Z., Akhtar M. S., Jabbar A., Khan M. N., Gilani A. H. Preliminary screening of Trachyspermum ammi (L.) seed for anthelmintic activity in sheep. Tropical animal health and production. 2006. Vol. 38(6). P. 491-496. doi: :10.1007/s11250-006-4315-6
  • 70. Hordegen P., Cabaret J., Hertzberg H., Langhans W., Maurer V. In vitro screening of six anthelmintic plant products against larval Haemonchus contortus with a modified methyl-thiazolyl-tetrazolium reduction assay. Journal o f ethnopharmacology. 2006. Vol. 108(1). Р. 85-89. doi: 10.1016/j.jep.2006.04.013
  • 71. Cala A. C., Ferreira J. F., Chagas A. C., Gonzalez J. M., Rodrigues R. A., Foglio M. A., Oliveira M. C., Sousa I. M., Magalhaes P. M., Barioni Junior W. Anthelmintic activity of Artemisia annua L. extracts in vitro and the effect of an aqueous extract and artemisinin in sheep naturally infected with gastrointestinal nematodes. Parasitology researchrn 2014. Vol. 113(6). P. 2345-2353. doi: 10.1007/s00436-014-3891-z
  • 72. Boyko O. O., Kabar A., Brygadyrenko V. Nematicidal activity of aqueous tinctures of medicinal plants against larvae of the nematodes Strongyloides papillosus and Haemonchus contortus. Biosyst. Divers. 2020. Vol. 28. P. 119-123.
  • 73. Mahmoudvand H., Dezaki E. S., Kheirandish F., Ezatpour B., Jahanbakhsh S., Harandi M. F. Scolicidal effects of black cumin seed (Nigella sativa) essential oil on hydatid cysts. The Korean journal o f parasitology. 2014. Vol. 52(6). P. 653-659. doi: 10.3347/kjp.2014.52.6.653
  • 74. Boubaker Elandalousi R., Akkari H., B'chir F., Gharbi M., Mhadhbi M., Awadi S., Darghouth M. A. Thymus capitatus from Tunisian arid zone: chemical composition and in vitro anthelmintic effects on Haemonchus contortus. Veterinary parasitology. 2013. Vol. 197(1-2). P. 374-378. doi: 10.1016/j.vetpar.2013.05.016
  • 75. Ferreira L. E., Benincasa B. I., Fachin A. L., Fran9 a S. C., Contini S. S. H. T., Chagas A. C. S., Beleboni R. O. Thymus vulgaris L. essential oil and its main component thymol : Anthelmintic effects against Haemonchus contortus from sheep. Veterinary parasitology. 2016. Vol. 228. P. 70-76. doi: 10.1016/j.vetpar.2016.08.011
  • 76. Pensel P. E., Maggiore M. A., Gende L. B., Eguaras M. J., Denegri M. G., Elissondo M. C. Efficacy of Essential Oils of Thymus vulgaris and Origanum vulgare on Echinococcus granulosus. Interdisciplinary perspectives on infectious diseases, 2014. 693289. doi: 10.1155/2014/693289
  • 77. Mupeyo B., Barry T. N., Pomroy W. E., Ramirez-Restrepo C. A., LopezVillalobos N., Pernthaner A. Effects of feeding willow (Salix spp.) upon death of established parasites and parasite fecundity, Animal Feed Science and Technology, 2011. Vol. 164(1-2). P. 8-20. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2010.11.015
  • 78. KJavina A., Keidane D., Ganola K., Lusis I., Sukele R., Bandere D., Kovalcuka L. Anthelmintic Activity of Tanacetum vulgare L. (Leaf and Flower) Extracts against Trichostrongylidae Nematodes in Sheep In Vitro. Animals. 2023. Vol. 13(13). 2176. doi: 10.3390/ani13132176